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降低ELISA實(shí)驗(yàn)中非特異性背景的核心方法是從封閉、洗滌、抗體、孵育四個(gè)關(guān)鍵環(huán)節(jié)優(yōu)化操作,減少非目的蛋白的非特異性結(jié)合?,具體優(yōu)化方案如下:
一、優(yōu)化封閉步驟,chedi阻斷未結(jié)合位點(diǎn)
封閉是降低背景最關(guān)鍵的步驟,需根據(jù)實(shí)驗(yàn)體系調(diào)整封閉液類型和條件:
1、選擇合適的封閉液?
常規(guī)間接法/夾心法ELISA推薦使用?5%脫脂牛奶?(溶于PBST或TBST),成本低且封閉效果好;若檢測(cè)磷酸化蛋白,需避免使用牛奶(含磷酸化蛋白會(huì)干擾磷酸化抗體結(jié)合),改用?1-3% BSA?或?1%明膠?封閉。
對(duì)背景偏高的實(shí)驗(yàn),可添加0.05-0.1% Tween-20到封閉液中,進(jìn)一步減少疏水相互作用導(dǎo)致的非特異性結(jié)合。
2、調(diào)整封閉條件?
封閉時(shí)間至少1小時(shí)(室溫?fù)u床封閉),若背景偏高可延長(zhǎng)至4℃封閉過夜,讓封閉液充分結(jié)合所有未被抗原/抗體占據(jù)的固相位點(diǎn)。
封閉后不需要過度洗滌,僅用洗滌液洗1-2次即可,避免洗脫已結(jié)合的封閉蛋白。
二、強(qiáng)化洗滌操作,去除未結(jié)合的游離蛋白
洗滌不chedi是背景偏高最常見的原因,需規(guī)范洗滌流程:
1、選擇合適的洗滌緩沖液?:推薦使用含?0.05% Tween-20?的PBST或TBST,Tween-20可以破壞疏水相互作用,洗去非特異性吸附的蛋白,同時(shí)不會(huì)破壞抗原抗體的特異性結(jié)合。
2、規(guī)范洗滌步驟?:
每次孵育后必須洗滌,洗滌次數(shù)至少3-5次,背景偏高時(shí)可增加至6次;每次洗滌需要讓洗滌液wanquan覆蓋孔底,浸泡30-60秒后再chedi吸干,不能殘留液體。
手工洗滌時(shí)要確保每孔都加滿洗滌液,避免孔壁殘留未結(jié)合蛋白;洗板機(jī)洗滌后,需要將酶標(biāo)板在吸水紙上拍干,chedi去除孔內(nèi)殘留液體。
三、優(yōu)化抗體工作條件,降低非特異性結(jié)合
抗體濃度過高或特異性不足會(huì)直接導(dǎo)致背景升高,可從以下方面調(diào)整:
1、降低抗體工作濃度?:一抗和二抗都需要通過預(yù)實(shí)驗(yàn)摸索最佳工作濃度,不要盲目按說明書推薦的最高濃度使用;適當(dāng)降低抗體濃度,能大幅減少非特異性結(jié)合,通常背景偏高時(shí)可將抗體稀釋度提高1-2倍(即濃度降低一倍)。
2、選擇高特異性抗體?:優(yōu)先選擇單克隆抗體或經(jīng)過抗原親和純化的多克隆抗體,降低血清中雜抗體帶來的非特異性結(jié)合;若使用直接標(biāo)記的一抗,優(yōu)先選擇HRP直接標(biāo)記的高純度抗體,減少二抗帶來的交叉反應(yīng)。
3、調(diào)整抗體孵育條件?:優(yōu)先選擇4℃孵育過夜(搖床緩慢搖動(dòng)),相比37℃孵育1-2小時(shí),4℃孵育能提高特異性結(jié)合的比例,降低非特異性結(jié)合??贵w稀釋液推薦使用含1% BSA的洗滌液,進(jìn)一步減少非特異性吸附。
四、其他環(huán)節(jié)的針對(duì)性優(yōu)化
1、減少底物污染與孵育問題?:底物工作液要現(xiàn)配現(xiàn)用,避免污染;孵育底物過程要避光,顯色時(shí)間不要過長(zhǎng),當(dāng)陽性孔出現(xiàn)明顯顏色后就可及時(shí)終止,避免過度顯色導(dǎo)致整體背景升高。
2、避免固相載體問題?:選擇高質(zhì)量的ELISA板,若使用未預(yù)活化的空白板,可提前用包被液活化后再包被抗原,減少蛋白非特異性吸附;包被抗原/抗體的濃度不要過高,過量的抗原會(huì)導(dǎo)致未結(jié)合位點(diǎn)增多,升高背景。
3、加入阻斷劑降低交叉反應(yīng)?:若使用雙抗夾心法檢測(cè)樣本中蛋白,當(dāng)一抗和二抗來源于同一物種時(shí),會(huì)出現(xiàn)Fc段結(jié)合導(dǎo)致的非特異性背景,可在體系中加入?適當(dāng)濃度的正常血清IgG?或商業(yè)化的Fc封閉劑,阻斷交叉反應(yīng)。
4、設(shè)置陰性質(zhì)控排查背景來源?:實(shí)驗(yàn)時(shí)設(shè)置只加二抗不加一抗、只加封閉液不加抗原的空白對(duì)照,可明確背景是非特異性封閉不足還是二抗導(dǎo)致,方便針對(duì)性調(diào)整。
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