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藍景科信河北生物科技有限公司
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雙DNA親和純化測序(dDAP-seq):轉(zhuǎn)錄因子復(fù)合體結(jié)合位點解析技術(shù)

時間:2026/6/23閱讀:346
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一、技術(shù)介紹

在生物體內(nèi),絕大多數(shù)轉(zhuǎn)錄因子并非單獨發(fā)揮作用,而是通過與自身蛋白、其他轉(zhuǎn)錄因子或其他蛋白形成同源/異源二聚體/多聚體復(fù)合物來行使功能。如何挖掘這類復(fù)合物關(guān)鍵調(diào)控因子,對解析細胞內(nèi)復(fù)雜的基因調(diào)控網(wǎng)絡(luò)至關(guān)重要。目前,一個新技術(shù)——雙DNA親和純化測序的(dDAP-seq)出現(xiàn),為這類研究提供了新的思路和手段。雙DNA親和純化測序(dDAP-seq)是在DNA親和純化測序(DAP-seq)技術(shù)基礎(chǔ)上進化而來,其核心原理為:通過體外共表達兩個帶有不同親和標(biāo)簽的轉(zhuǎn)錄因子,使其在體外形成異源二聚體,再與基因組DNA片段孵育結(jié)合,進一步富集與目的蛋白結(jié)合的DNA,經(jīng)高通量測序及生物信息學(xué)分析,在全基因組范圍內(nèi)定位相互作用轉(zhuǎn)錄因子的結(jié)合位點。將dDAP-seq與DAP-seq聯(lián)合應(yīng)用,還可系統(tǒng)分析單轉(zhuǎn)錄因子與轉(zhuǎn)錄因子復(fù)合體DNA結(jié)合偏好特征與差異,為深入解析轉(zhuǎn)錄因子協(xié)同互作、精細繪制基因調(diào)控網(wǎng)絡(luò)提供了全新解決方案。

藍景科信dDAP-seq技術(shù)路線圖

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二、藍景科信dDAP-seq技術(shù)驗證

藍景科信基于dDAP-seq技術(shù)已經(jīng)完成多個客戶項目,積累了豐富的實驗數(shù)據(jù)和項目經(jīng)驗。近期,藍景科信對已發(fā)表在《Nature Plants》的dDAP-seq數(shù)據(jù)[1]進行了驗證,實驗結(jié)果充分證明了公司自建流程的可靠性和準(zhǔn)確性。結(jié)果顯示(如下圖),轉(zhuǎn)錄因子異源二聚體形成后,結(jié)合峰數(shù)量較單轉(zhuǎn)錄因子的結(jié)合峰數(shù)量顯著提升,且結(jié)合基序偏好發(fā)生了改變。該結(jié)果與文獻報道高度一致,且整體數(shù)據(jù)質(zhì)量比文章結(jié)果更優(yōu)。

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圖1. DAP-seq與dDAP-seq數(shù)據(jù)集中檢測到的峰數(shù)量及主要基序分布

三、       dDAP-seq相關(guān)驗證實驗介紹

(一)       體外蛋白pull-down

在進行dDAP-seq前,首先需要體外驗證兩種轉(zhuǎn)錄因子或蛋白的直接物理互作,排除dDAP-seq結(jié)合信號的非特異性結(jié)合干擾,實驗流程如下:

蛋白制備:分別純化獲得標(biāo)簽標(biāo)記誘餌蛋白與候選互作靶蛋白;

體外孵育:將誘餌蛋白與靶蛋白體外共孵育,同時設(shè)置空載標(biāo)簽蛋白作為陰性對照;

親和富集:利用親和樹脂捕獲誘餌蛋白及其結(jié)合的互作蛋白,洗脫富集復(fù)合物;

蛋白檢測:通過Western blot檢測各組結(jié)合產(chǎn)物中靶蛋白表達情況。

結(jié)果判定:單一蛋白組僅存在自身條帶,共孵育實驗組可檢測到特異性互作條帶,空載對照組無特異性條帶。

結(jié)果示例[2]:

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圖2. 蛋白pull-down實驗結(jié)果。使用SBP抗體,分別對SBP-bZIPS1和Halo-bZIPC 混合后(泳道標(biāo)注為Input)及經(jīng)Halo標(biāo)簽配體偶聯(lián)磁珠親和純化的產(chǎn)物(泳道標(biāo)注為IP)進行檢測。以Halo標(biāo)簽空載體作為陰性對照。WB:蛋白質(zhì)印跡法;IP:免疫沉淀。

(二)凝膠遷移實驗(EMSA)

該實驗用于體外直接驗證二聚體與靶DNA的特異性結(jié)合,并區(qū)分單體與復(fù)合物條帶,實驗流程如下:

探針制備:合成并標(biāo)記包含dDAP-seq鑒定的結(jié)合位點的DNA探針;

蛋白孵育:分別制備單轉(zhuǎn)錄因子蛋白、兩種轉(zhuǎn)錄因子混合蛋白,與標(biāo)記探針體外孵育;

凝膠電泳:非變性聚丙烯酰胺凝膠電泳,分離游離探針與蛋白–DNA復(fù)合物;

結(jié)果判定:單轉(zhuǎn)錄因子組出現(xiàn)較快遷移條帶(單體結(jié)合),雙轉(zhuǎn)錄因子共表達組出現(xiàn)更慢遷移條帶(異源二聚體結(jié)合),條帶位置與單體組明顯區(qū)分;

結(jié)果示例:

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圖3. EMSA實驗結(jié)果。Lane1:轉(zhuǎn)錄因子1+陽性探針;Lane2:轉(zhuǎn)錄因子2+陽性探針;Lane3:轉(zhuǎn)錄因子1和轉(zhuǎn)錄因子2復(fù)合體+陽性探針。

(三)雙熒光素酶報告基因驗證(Dual-LUC)

用于體內(nèi)驗證轉(zhuǎn)錄因子復(fù)合物對靶基因的轉(zhuǎn)錄調(diào)控活性,量化協(xié)同調(diào)控效應(yīng),實驗流程如下:

報告載體構(gòu)建:將dDAP-seq鑒定的靶基因啟動子區(qū)插入熒光素酶報告載體;

效應(yīng)載體共轉(zhuǎn)染:將兩個轉(zhuǎn)錄因子表達載體與報告載體、內(nèi)參載體共轉(zhuǎn)染細胞;

分組設(shè)置:設(shè)置空載體對照、單轉(zhuǎn)錄因子組、雙轉(zhuǎn)錄因子共轉(zhuǎn)組;

熒光檢測:檢測螢火蟲/海腎熒光素酶活性,計算相對活性

結(jié)果判定:雙因子共轉(zhuǎn)組活性顯著高于/低于單因子組,證明轉(zhuǎn)錄因子復(fù)合物協(xié)同激活/抑制靶基因轉(zhuǎn)錄。

結(jié)果示例:

圖片4_watermarked (2) 

圖4. 雙熒光素酶報告基因驗證實驗結(jié)果。EV+EV+EV:空載+空載+空載;EV+a+EV:空載+靶基因啟動子+空載;TF1+a+EV:轉(zhuǎn)錄因子1+靶基因啟動子+空載;TF2+a+EV:轉(zhuǎn)錄因子2+靶基因啟動子+空載;TF1+a+TF2:轉(zhuǎn)錄因子1+靶基因啟動子+轉(zhuǎn)錄因子2。

 

藍景科信:轉(zhuǎn)錄調(diào)控研究的合作伙伴

藍景科信深耕功能基因組學(xué)領(lǐng)域,累計完成260+物種,4000+轉(zhuǎn)錄因子的實驗項目,憑借高質(zhì)量的服務(wù),已助力合作客戶在Cell,Science,Molecular Plant,Plant Biotechnology Journal,Journal of Advanced Research,Plant Cell,PNAS等數(shù)十期刊發(fā)表高質(zhì)量研究成果。

藍景科信核心服務(wù)體系涵蓋DAP-seq、dDAP-seq及ChIP-seq等組學(xué)技術(shù),同時配套EMSA、Dual-LUC、Y1H、ChIP-qPCR等下游驗證方案,并提供蛋白Pull-down、Y2H、Co-IP等全套蛋白互作服務(wù)。打造“組學(xué)檢測—功能驗證—互作分析"一站式轉(zhuǎn)錄因子研究解決方案,支撐科研工作高效推進!

參考文獻

[1]       Galli M, Chen Z, Ghandour T, et al. Transcription factor binding divergence drives transcriptional and phenotypic variation in maize. Nat Plants. 2025;11(6):1205-1219. doi:10.1038/s41477-025-02007-8

[2]       Li M, Yao T, Lin W, et al. Double DAP-seq uncovered synergistic DNA binding of interacting bZIP transcription factors. Nat Commun. 2023;14(1):2600. Published 2023 May 5. doi:10.1038/s41467-023-38096-2

 

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